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PCR之引物設(shè)計(jì)遵守原則
點(diǎn)擊次數(shù):321 更新時(shí)間:2023-12-05

熒光定量PCR是實(shí)驗(yàn)室中出鏡率非常高的一種技術(shù)手段。它通過在PCR體系中添加熒光基團(tuán)來顯示DNA產(chǎn)物的累積情況,從而達(dá)到對(duì)PCR過程進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)控的目的。并且可以通過數(shù)據(jù)分析計(jì)算出起始模板量,這就是“熒光定量"中“定量"一詞的來源。

熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)因?yàn)殪`敏度高所以經(jīng)常是差之毫厘謬以千里,所以在實(shí)驗(yàn)過程中,我們需要注意諸多細(xì)節(jié),謹(jǐn)慎操作。小伙伴們看到這里就要著急了,我怎樣才能做好qPCR實(shí)驗(yàn),拿到實(shí)驗(yàn)結(jié)果,發(fā)表高分文章,走上人生dian峰呢?

引物設(shè)計(jì)的好壞,關(guān)乎著擴(kuò)增效率的高低、產(chǎn)物特異性的與否。所以正確設(shè)計(jì)出引物是qPCR成功的第一步。

首先,我們知道qPCR是特殊的PCR,所以,qPCR的引物設(shè)計(jì)要滿足一般PCR引物設(shè)計(jì)的原則,見下表。


引物原則.png


除此之外,qPCR引物設(shè)計(jì)需要額外注意幾點(diǎn)。

1. 擴(kuò)增片段長(zhǎng)度:

擴(kuò)增效率隨著擴(kuò)增子長(zhǎng)度減小而增大,建議擴(kuò)增產(chǎn)物最好在80-200bp的范圍,若產(chǎn)物小于75bp,擴(kuò)增子很難與引物二聚體區(qū)分開,若產(chǎn)物大于300bp,則會(huì)因?yàn)槊富罱档蛯?dǎo)致擴(kuò)增效率降低。如果你的擴(kuò)增產(chǎn)物因?yàn)閷?shí)驗(yàn)需求一定要在500-600bp的話,做qPCR實(shí)驗(yàn)時(shí)要選用三步法擴(kuò)增,不要用快速兩步法擴(kuò)增。

2. 區(qū)分isoform:

對(duì)于同一個(gè)基因名來說,可能會(huì)有不同的isoform。isoform指的是,對(duì)于同一個(gè)基因,它的mRNA有多種不同剪接方式,這個(gè)時(shí)候表達(dá)出來的的蛋白可能會(huì)有不同,所以小伙伴們?cè)谠O(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)的時(shí)候,一定要想清楚自己要做的是哪一個(gè)isoform。

舉個(gè)“栗子":比如說一個(gè)基因有四種不同的isoform,如果大家想要檢測(cè)的是四種不同剪接方式轉(zhuǎn)錄本之和,那么設(shè)計(jì)引物時(shí)就要針對(duì)這四個(gè)isoform的共有序列設(shè)計(jì)。如果只想檢測(cè)其中一種isoform,那就要在這個(gè)isoform與其他三個(gè)isoform的不同序列位置設(shè)計(jì)引物。

3. 跨內(nèi)含子設(shè)計(jì)引物:

跨越內(nèi)含子設(shè)計(jì)引物可以區(qū)分并且規(guī)避基因組DNA污染。設(shè)計(jì)引物時(shí)需要讓一端或兩端引物跨越內(nèi)含子,以人基因組來說,平均每個(gè)基因有8.8個(gè)外顯子和7.8個(gè)內(nèi)含子,80%的外顯子長(zhǎng)度小于200bp,少于10%的內(nèi)含子長(zhǎng)度在1100bp以上,不到0.01%的內(nèi)含子長(zhǎng)度小于20bp。(Sakharkar MK et al. Distributions of exons and introns in the human genome[J].In Silico Biol. 2004;4(4):387-93.)例如外顯子長(zhǎng)度200bp,為了兼顧擴(kuò)增子長(zhǎng)度,我們可以把上游引物設(shè)置在外顯子1和外顯子2的中間,下游引物設(shè)置在外顯子2的位置。


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